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 葉酸測定用培養基原理


 正常的血清葉酸水平正常為9.9ng / ml。在身異?；虻貌r，葉酸水平顯著變化。葉酸干酪培養基用干酪乳桿菌（TCC 7469）為測定用菌，用于葉酸的微生物法測定。該培養基是基于Flynn等(1)的配方，并經Baker等(2)和Waters、Mollin(3)改良。用于維生素測定的測定菌通常需要三種培養基：維持培養基、接種培養基和測定用培養基。后者通常是化學限定的培養基，包含有測定菌生長需的養分，但不含有待測的分子。類似的，葉酸干酪培養基包含干酪乳桿菌生長需的有成分，但不包含葉酸。因而，添加系列濃度增加的葉酸，觀察到干酪乳桿菌生長應的遞增。


 


 


 干酪乳桿菌（TCC 7469）的貯備菌制備是在OC推薦的乳桿菌瓊脂（貨號M366）試管穿刺接種培養，35-37°C孵育18-24小時后，試管儲存在冰箱里。每月轉接次。測定菌液的制備是將貯備菌轉種到含10ml微量維生素檢測接種肉湯（貨號M133）或乳酸桿菌肉湯（貨號M367）的試管中。35-37°C孵育24小時后，在無菌件下菌液離心，棄掉清，再重懸于10ml的無菌葉酸干酪培養基中（貨號M543）。再像之前樣沉淀，并清洗次。{zh1}，清洗后的菌株重懸于10ml葉酸干酪培養基中，并用該培養基進行1:100稀釋。1滴重懸液用于接種到每個測定管中。也可用0.85% NaCl代培養基來清洗和稀釋。


 


 


 由于mj件，孵育溫度等因素影響標準曲線讀數，并且每次不完樣，因此每次都應制備標準曲線。10ml管內的標準品量為0,0.1,0.2,0.4,0.6,0.8,1ng。


 


 


 葉酸標準品的制備：將20mg葉酸干粉溶于含有20ml乙醇的100ml蒸餾水中。用0.1N NaOH調整溶液pH值為10.0，再用0.05N HCl調pH為 7.0。該溶液含有200g葉酸/ml。用999ml蒸餾水稀釋1ml該溶液，則濃度為200ng/ml。再用999ml葉酸緩沖液（貨號M544）稀釋1ml該溶液，則為0.2ng/ml的葉酸標準溶液。每管取0, 0.5, 1.0, 2.0, 3.0, 4.0和5ml該溶液，配置即告完成。


 


 


 血清樣本的保存：讓血液樣本凝固以分離血清。分離血清至干凈干燥的血清管，并離心除去存在的任何血細胞。小心操作，避免出紅細胞的溶血。分裝血清樣本至于干凈干燥的試管中，每管5ml。每管加入25mg的抗壞血酸。-20°C以下溫度保存。


 


 


 血清樣本的制備：解凍含有抗壞血酸的血清。向5ml樣品中加入45ml葉酸緩沖液（M544）。孵育37℃90分鐘。然后15磅121℃高壓mj2.5分鐘。離心去除凝固的蛋白，將清液轉移至清潔干燥的管中。該明溶液即可用作葉酸待測的樣本。


 


 


 樣本葉酸濃度的測定步驟：如前述使用0.5,1.0,1.5ml或其他積的制備好的血清提取物。加入5ml葉酸干酪培養基和足量的蒸餾水，使每個試管的總積為10ml。15磅121°Cmj5分鐘。冷卻試管并向每個試管中加入滴接種液。35-37℃孵育18-24小時后進行濁度讀數。讀數前將試管冷藏15-30分鐘以停止xj生長。620nm檢測吸光度。待測樣品中的葉酸含量應根據標準曲線來確定，不過要慮樣品稀釋度。


 


 


 應非常小心，避免培養基和玻璃器具被污染。應使用潔凈的無去污劑的玻璃器具。少量的外源物質的污染可能導致錯誤的結果。




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